EDTA洗液(10%)

检测试剂盒标本保存方法：标本凝集不全。在没有促凝剂和抗凝剂存在的状况下，正常血液搜集后1/2~2h初步凝聚，18~24h完全凝聚。临床查验工作中，有时为了争取时刻快速检测，常在血液还未初步凝聚时即强行离心分别血清，此时的血清中仍残留部分纤维蛋白原，在测定过程中可以构成肉眼可见的纤维蛋白块，易形成假阳性作用；这类状况于次日复查时因血凝已完全，血清中不再有纤维蛋白原存在，故复查作用变为阴性。为避免上述烦扰作用，处理的办法是血液标本搜集后有必要使其充沛凝聚后再分别血清，或标本搜集时用带分别胶的采集血液管或于采集血液管中加入适当的促凝剂。在启用检测试剂盒之前，应重复检测阴性和阳性对照品和样品。EDTA洗液(10%)

在缓冲溶液中加入少量强酸或强碱，其溶液pH值变化不大，但若加入酸，碱的量多时，缓冲溶液就失去了它的缓冲作用。这说明它的缓冲能力是有一定限度的。缓冲溶液的缓冲能力与组成缓冲溶液的组分浓度有关。0.1mol·L-1HAc和0.1mol· L-1NaAc组成的缓冲溶液，比0.01mol·L-1HAc和0.01mol·L-1NaAc的缓冲溶液缓冲能力大。关于这一点通过计算便可证实。但缓冲溶液组分的浓度不能太大，否则，不能忽视离子间的作用。组成缓冲溶液的两组分的比值不为1∶1时，缓冲作用减小，缓冲能力降低，当c(盐)/c(酸)为1∶1时△pH小，缓冲能力大。不论对于酸或碱都有较大的缓冲作用。乙酸水溶液(3%)注意事项：为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

酶的校正：要满足在同一方法学、同一测定条件、与理论计算的FACTOR值差异不大，没有发现有明显影响因素，方可 进行校正。检验结果溯源性，得建立一个可靠的参考系统作为准确性基础，然后将准确性转移到常规方法测定中去，使常规方法测定结果可溯源到参考系统所提供的准确性基础上来。在实现溯源性目标过程中，永远以患者新鲜标本为实验对象，以方法学对比试验方法为验证手段。方法学对比试验常采用回归方程进行统计分析，假如斜率接近1，截距较小，这意味着实验室常规方法对标本测定结果和溯源目标参考系统对标本检测结果非常接近。

缓冲溶液的配制和应用：为了配制一定pH的缓冲溶液，首先选定一个弱酸，它的pKaφ尽可能接近所需配制的缓冲溶液的pH值，然后计算酸与碱的浓度比，根据此浓度比便可配制所需缓冲溶液。以上主要以弱酸及其盐组成的缓冲溶液为例说明它的作用原理、pH计算和配制方法。对于弱碱及其盐组成的缓冲溶液可采用相同的方法。缓冲溶液在物质分离和成分分析等方面应用普遍，如鉴定Mg2 离子时，可用下面的反应：白色磷酸铵镁沉淀溶于酸，故反应需在碱性溶液中进行，但碱性太强，可能生成白色Mg（OH）2沉淀，所以反应的pH值需控制在一定范围内，因此利用NH3·H2O和NH4Cl组成的缓冲溶液，保持溶液的pH值条件下，进行上述反应。PBS是磷酸缓冲盐溶液(phosphate buffer saline)一般作为溶剂。

检测试剂盒安全性：试剂应按标签说明书储存，使用前恢复到室温。稀稀过后的标准品应丢弃，不可保存。实验中不用的板条应立即放回包装袋中，密封保存，以免变质。不用的其它试剂应包装好或盖好。不同批号的试剂不要混用。保质前使用。使用一次性的吸头以免交叉污染，吸取终止液和底物A、B液时，避免使用带金属部分的加样器。使用干净的塑料容器配置洗涤液。使用前充分混匀检测试剂盒里的各种成份及样品。洗涤酶标板时应充分拍干，不要将吸水纸直接放入酶标反应孔中吸水。底物A应挥发，避免长时间打开盖子。液体培养基接种向肉膏蛋白胨液体培养基中接种少量菌体时，其操作步骤基本与斜面接种时相同。甘油溶液(20%)

固体试剂的取用:直接倾倒时瓶口必须紧挨试管口，试管45度，并且缓缓地倒。EDTA洗液(10%)

我们在检测试剂盒实验中，有时会遇到样品浓度挨近检测试剂盒的灵敏度就容易发生样本OD450值低于空白值的现象，特别是在血清和血浆样本中。这就有可能是基质效应导致的结果。首先我们要知道什么是基质，基质是指样品中目标分析物以外的部分。由于基质成分会对分析过程有明显干扰，影响分析结果的准确性。业内把这些影响统称为基质效应。这是检测试剂盒开发和使用中需要避开的雷。如何判断是否是基质效应呢？当单个样本或少量样本值低于空白值时，可能是实验操作出现问题，这时应增加重复，进步操作技术。当许多样本都低于空白值时，应思考基质效应的影响，建立校正曲线予以修改。基质效应的原因错综复杂，有可能是样品中存在的基质导致原抗体的联络结合能力下降，便产生了样本值低于空白值的现象。导致样本值无法计算出数值，或许数值为负。EDTA洗液(10%)